1.2.9 抑制肿瘤细胞生长的检测方法采MTT(四唑蓝)法:
实验重复两次,每组实验设平行孔,壳寡糖给药组剂量分别为 1mg/ml,400μg/ml,100μg/ml,10μg/ml,贴壁细胞于实验前一天铺板,悬浮细胞于实验当天处理。每孔细胞数为1x105,终体积为1ml。阳性对照药物顺铂浓度为10μg /ml。加药后培养72小时,加MTT及溶解液,于595nm比色测定,并根据吸光度计算抑制率。
1.2.10 排染法检测壳寡糖对HCa-F的抑制率
分别在第3、6、24小时取各孔的细胞悬液50微升于载玻片上,再加台酚蓝染液50微升,混匀后在显微镜下观察。核蓝染的为死细胞。抑制率=死细胞数/细胞总数×100%。
结果
一 不同寡聚糖对Sarcima-180癌细胞的抑制作用
用寡聚糖进行抑瘤试验,筛选抑瘤作用较强的寡聚糖,结果表明:壳寡糖C-III-2的抑瘤率远高于甘露寡糖和磺化甘露寡糖,壳寡糖的三个处理中,浓度较低的,抑瘤率较高,达到99.5%(见表1)。
表1. 不同寡聚糖对S-180的抑瘤率
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样品 用量 抑瘤率
(mg/mL) (%) |
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5 59.5
甘露寡糖 2.5 60.5
1.5 12.9
5 18.8
磺化甘露寡糖 2.5 32.6
1.5 34.8
9.5 90.5
壳寡糖 7.1 98.5
4.7 99.5 |
二 壳聚糖不同批次对S-180肿瘤细胞的抑制作用
用体外抑瘤方法对壳寡糖不同批次进行快速筛选,结果表明:3种不同制备工艺的壳寡糖中对癌细胞DNA合成的抑制作用效果最好的是C-III-2,三个浓度的抑制率均达到90%以上(见表2)。故随后的抑瘤试验样品均选用壳寡糖(C-III-2)。
表2 壳聚糖不同批次对S-180肿瘤细胞DNA合成的抑制作用
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壳寡糖样品 浓度 抑制率 平均
(批次) (mg/ml) (%) (%) |
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48.3 99.8
C-III-2 4.83 97.4 98.5
0.48 98.2
52.3 87.5
C-II-2 5.23 81.3 82.8
0.52 79.7
47.6 13.3
C-I-2 4.76 13.5 23.5
0.46 43.7 |
三 壳寡糖(C-III-2)抑瘤作用的动物试验
1 壳寡糖对腹水瘤小鼠生存时间的影响
由表3可见,小鼠接种肿瘤后,与对照组比较,环磷酰胺阳性对照组生存时间延长37%(p<0.01);低、中、高剂量组生存时间分别延长16%(p<0.05),34%(p<0.01),35%(p<0.001)。
表3 口服壳寡糖30天对H22腹水瘤小鼠生存时间的影响
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组别 剂量 动物数 生存时间 P值
(mL/kg.bw) (只) (天) |
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空白对照组 0 12 11.9±2.2 ——
低剂量组 3.3 12 13.8±2.0* 0.0338
中剂量组 6.7 12 15.9±3.6** 0.0338
高剂量组 20.0 12 16.1±1.5*** 1.6×10-5
阳性对照组 0 12 16.3±2.6*** 0.0002 |
*: 差异显著性(p<0.05=, **:差异非常显著性(p<0.01=,***:差异极显著性(p<0.001= |